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细胞转染、药物筛选(试行)[2]

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细胞转染、药物筛选(试行)

第一天 细胞复苏

1、从液氮罐取出一管细胞),迅速置于37℃水浴锅中溶化。 2、和9ml FBS-DMEM(双抗)一起转移到14-ml的离心管中。 3、离心1000rpm 5min,负压吸去上清。

4、用FBS-DMEM(双抗)重悬细胞,铺到6孔板上(2ml液体)。

12hr后若死细胞很多需换液

1、负压吸去培养基。

2、加入2ml新鲜的FBS-DMEM(双抗)。

第三天 细胞传代

1、负压吸去培养基,加入2ml PBS,吸去PBS,加入0.5ml Trypsin。

2、室温放置约30秒,吸走胰酶。加入3毫升FBS-DMEM,吹打至单个细胞状态。

3、1:3传代,取2/3平分到2个6孔板的孔内。1孔转染,1孔支原体检测(不含抗性的培养基中连续传3代,最后一次传代后需不换液3天后取细胞做支原体检测)。 4、37度,5%CO2培养。

第五天 细胞传代

1、负压吸去培养基,加入2ml PBS,吸去PBS,加入0.5ml Trypsin。

2、室温放置约30秒,吸走胰酶。加入2毫升FBS-DMEM,吹打至单个细胞状态。

5

3、细胞计数,传代。使细胞数达到6*10个/毫升,取2毫升/孔加到2个孔内。(与支原体检测孔分开操作)

4、37度,5%CO2培养。

第六天 转染

1、 观察细胞,若状态良好,且细胞密度达到70-80%可以进行细胞转染。 2、 转染前2个小时细胞换上1毫升新鲜的FBS-DMEM(含血清,不含抗生素)。 3、 2个小时后取0.1毫升DMEM(不含药物,不含血清)加入1.5毫升EP管中。 4、 从-20度中取出DNA(1ug/ul),待全部溶解后将DNA混匀,取4 ug DNA加入到0.1毫升

DMEM中,混匀。

5、 将已溶解的PEI(PEI一定要最后加入)吹打混匀,取12ul加入0.1毫升DMEM中,将

PEI、DNA、DMEM三者轻轻吹打混匀。室温放置15分钟。

6、 将三者混合物分多点加入到2个小时前换液的细胞,成十字形摇晃培养基。 7、37度,5%CO2培养。

8、6小时后换上新鲜的FBS-DMEM(双抗)继续培养。

(若是双转浓度比例为DNA(1+2):PEI=1:3,即DNA1为2ug ,DNA2为2ug,PEI为12 ul) 第七天 细胞传代

1、 转染后24小时负压吸去培养基。

2、 加入2ml PBS,吸去PBS,加入0.5ml Trypsin。

3、 室温放置约30秒,吸走胰酶。加入2毫升FBS-DMEM(可以含抗生素),吹打至单个细胞

状态。

4、 1:3传代到3个10cm培养皿。 5、 37度,5%CO2培养。

第八天 药物加压

1、 转染后48小时负压吸去10cm 培养皿上清。 2、加入10 ml/10cm dish新鲜的FBS-DMEM(s/p).

2、 加入抗性筛选药(如加40 ul ZEO,使其终浓度为400 ug/ml)。 3、 持续加压14天。

4、 细胞加压后约第3天开始出现死亡细胞。第4、5、6天细胞出现大量死亡,第七天后背

景比较干净,可看到一些克隆。克隆形态为松散、可分出细胞形态和紧凑、分辨不出细胞形态,呈扁平隆起状。

5、 加压到第10天后挑克隆到96孔板内培养(含有加压的药物)。

6、 待96孔板内细胞长满后1:3消化传代,其中1/3用作96孔板细胞功能检测,2/3用作

冻存细胞。

细胞铺板,功能检测

1、负压吸去96孔板内培养基。

2、加入200ul/孔 PBS,吸去PBS,加入20ul/孔 Trypsin。室温放置约30秒。 3、加入90ul/孔FBS-DMEM(不含有加压的药物),中止胰酶作用,吹打至单细胞。

4、96孔板每孔共取75 ul,按25 ul/孔将75 ul细胞平均分到3个384孔板的孔内,其中3*2为转染细胞加配体检测孔,3*1为加DMSO阴性对照。剩余细胞在96孔板内继续培养(每孔内加170 ul FBS-DMEM(含有加压的药物))。 5、未转染的细胞取25 ul/孔(每孔20000个),按3*3加入384孔板内,其中3*2为未转染细胞阴性对照,3*1为阳性对照。

7、铺板后第二天细胞密度达到90%以上进行功能检测。

8、若有阳性克隆,将96孔板相对应的克隆号的细胞继续培养。 9、待细胞长满后传代到24孔板。

10、24孔板细胞长满后,将细胞进行亚克隆,挑单克隆进行功能检测。 11、将阳性孔细胞传代到6孔板,其中取一部分细胞进行支原体检测。 12、6孔板长满后,细胞传代到10cm dish ,细胞需冻存5支。

示意图如下

转染细胞 功能检测(重复孔) 转染细胞 阴性对照 阴性对照 (含配体) 未转染细胞 阴性对照 (DMSO) 阳性对照 注:试验中FBS-DMEM中所需的血清浓度,药物添加种类与数量由所用细胞及转染质粒抗性决定。

试剂配制:

0.05%胰酶

需0.25%胰酶 100毫升

PBS或液体DMEM 400毫升 5倍稀释,4度储存分装备用。

G418

液体分装,1ml/管,-20度保存,初浓度为50mg/mL,使用浓度为250ug/ mL。

ZEO

液体分装,1ml/管,-20度保存,初浓度为100mg/mL,使用浓度为400ug/ mL。 FBS

GIBCO公司生产,4度融化,45ml/管分装,-20度保存。

质粒DNA

干粉DNA 50ug ddH2O 50ul

震荡混匀,取2 ul验菌无误后使用,使用浓度为1 ug/ ul。

PEI

干粉 0.1g ddH2O 100 ml

过滤分装,-80度保存,使用浓度为1 ug/ ul。

Hygromycin B

液体分装,1ml/管,4度保存,储存浓度为50 mg/mL,使用浓度为400ug/ mL。

双抗(青链霉素)

ddH2O溶解固体粉末,过滤分装,-20度保存,储存浓度为10000U/ mL,使用浓度为100U/ mL。

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