第38卷第2期 2 0 l 1年O3月 酿 酒 MAKING V01.38.№.2 M81".,201l LIQUOR 文章编号:1002—81lo(2011)02一O044—03 产酯酵母和耐高温酵母原生质体形成与再生条件研究★ 方尚玲1,刘源才 ,郭圣祥 ,李锐利 ,陈茂彬 (1.发酵工程省部共建教育部重点实验室,湖北工业大学生物工程学院,湖北2.劲牌有限公司,湖北大冶435100) 武汉430068; 摘要:选取脱壁预处理时间、蜗牛酶浓度、酶解时间三因素设计三因素三水平正交试验来研究产酯酵母和耐 高温酵母原生质体形成与再生条件。结果表明,产酯酵母原生质体形成与再生最佳条件为:预处理20min、1% 蜗牛酶酶解30min;耐高温酵母为:预处理10min,1.5%蜗牛酶酶解60min。 关键词:产酯酵母;耐高温酵母;原生质体形成与再生;正交试验 中图分类号:TS261.11;TS261.15;Q933 文献标识码:B Studies on protoplast formation and regeneration of ester-producing yeast and thermotolerant yeast FANG Shang—linI,LIU Yuan—cai2,GUO Sheng—xiang ̄.LI Rui—li1,CHEN Maobin “ f1.Key Laboratory of Fermentation Engineering(Ministry of Education),College of Bioengineering,Hubei University of Technology,Wuhan 430068,China; 2.jing Brand Co.Ltd.,Daye,Hubei 435100,China) Abstract:Through the three factors(ineludeing pretreatment itme,enzyme concentra—tion,enzymolysis time)three levels orthogonal test tO study the optimal conditions of protoplsta formation and regeneration of ester-producing yeast and thermotolerant yeast.The esulrt indicated that the optimal conditions of protoplast formation and regeneration for ester-producing yeast were as follows:pretreatment Was 20 minutes, snail enzyme concentration was 1%.zymolysis time was 30 minutes;for thermotoler—ant yeast were that pretreatment Was 10 minutes,snail enzyme concentration was 1.5%.zymolysis time was 60 minutes. Key words:Ester-producing yeast;thermotolerant yeast;protoplast formation and regeneration;orthogonal test 产酯酵母是白酒生香重要的微生物菌群,添加适量的产 酯酵母,对增加白酒的风味成分,保证和稳定酒质十分重要 ill。而且运用原生质体融合选育耐高温酵母已有诸多报道[3-51,证 明以上设想是完全可行的。本文旨在对产酯酵母和耐高温酵 母原生质体形成与再生条件进行研究,为之后的融合育种打 下基础。因为原生质体的形成与再生是融合的基础与前提,能 白酒发酵过程中,品温一般会升高至38~40 ̄Ct21,但是,目前 使用的产酯酵母多是从自然界分离筛选出来的野生型菌株, 存在着耐温性能较差等缺点,因此就了产酯酵母的应用。 本研究从酿酒用曲中分离得到一株产乙酸乙酯量高的产 酯酵母和一株耐高温酵母,该产酯酵母产乙酸乙酯量高,但在 38℃就不能生长。耐高温酵母产酯能力弱,50%仍然生长良好。 够获得较高的原生质体形成率和再生率,是保证融合育种效 率的首要条件 。 1 材料与方法 1.1 材料 如果能够通过原生质体融合,选育出具有一定耐温能力,适合 白酒生产条件的产酯酵母,将大大提升产酯酵母的应用前景。 基金项目:国家自然科学基金项目《31071594):湖北省自然科学基 金(2008CDB063);2009年博士科研启动基金BSQD0910;发酵工 1.1.1菌株 产酯酵母、耐高温酵母:分离自白酒酿造用曲 1.1.2培养基 液体YEPD培养基:葡萄糖2%,酵母膏1%,蛋白胨2%; 固体YEPD培养基:葡萄糖2%,酵母膏1%,蛋白胨2%,琼脂 1%;高渗再生YEPD培养基:固体完全培养基(YAPD)中加入 0.6mol/L蔗糖。 1.1.3试剂 程省部共建教育部重点实验窒开放基金(2009KFJJO1】 收稿日期:201卜0卜18 作者简介:方尚玲,女,湖北蕲春,博士,副教授,主要研究方向:工业 微生物。 ”通讯作者:陈茂彬,男,博士,教授,主要研究方向:酿酒技术。 pH6.0柠檬酸—磷酸缓冲液 ;渗透压稳定剂:0.8mol/L 第二期 方尚玲,等:产酯酵母和耐高温酵母原生质体形成与再生条件研究 2011 KC1,用柠檬酸一磷酸缓冲液配制;酶液:1.0%、1.5%、2.O%蜗 牛酶,用渗透压稳定剂配制,0.45um微孑L滤膜过滤除菌;脱壁 预处理剂:10mmol/L MgSO ,50mmo1]L二硫苏糖醇(DDT),用 渗透压稳定剂配制。 1.1.4仪器设备 ZHJH—C1214B超净工作台:上海智诚分析仪器制造有限 公司;ZHWY一2102C恒温摇床培养箱:上海智诚分析仪器制 造有限公司;PHX智能生化培养箱:宁波莱福科技有限公司; WFS2000可见分光光度计:尤尼柯(上海)仪器有限公司; TGL-16C台式离心机:上海安亭科学仪器厂;HH一6数显恒温 水浴锅:江苏省金坛市荣华仪器制造有限公司;XSP一8CE显 微镜:上海蔡康光学仪器有限公司;TK—C1201EC彩色摄像 机:北京杰伟世视音频设备有限公司;BCD一226冰箱:博西华 家用电器有限公司。 1.2方法 一目co9 一 00 1.2.1酵母菌生长曲线的绘制[M 81 m 6 4 2 将待测菌株接种于YEPD液体培养基中,30 活化 24h,再转接于50mL YEPD液体培养基中,同时做3个平行 样和一个空白对照,用分光光度计每隔2h测量一次培养液 OD值(600nm)。以培养时间为横坐标,OD值为纵坐标,绘制生 长曲线。 1.2.2酵母菌原生质体形成与再生条件正交试验 1.2.2.1酵母菌原生质备[91 将两株酵母菌株在液体YEPD培养基中30℃活化24h。 将活化后的酵母菌分别接种于装有50mlYEPD的150mL三 角瓶中,30℃振荡培养至对数生长前期。将上述培养液 3500r/min离心收集菌体,用无菌水离心洗涤两次,尽可能除 去杂质。将酵母细胞分别悬浮于3ml脱壁预处理溶液中,30℃ 振荡处理,之后3500r/min离心收集菌体。将菌体悬浮于3mL 的蜗牛酶液中,3O℃振荡培养,酶解一段时间可取样用显微镜 观察细胞形成原生质体情况。到达酶解时间之后,5000r/min 离心收集原生质体细胞,用渗透压稳定剂洗涤离心2次,之后 将原生质体细胞悬浮于渗透压稳定剂中。 I.2.2.2酵母菌原生质体形成与再生条件正交试验 选取脱壁预处理时间、蜗牛酶浓度、酶解时间j个因素, 设计三因素三水平正交试验来探讨Y1酵母菌原生质体形成 与再生的最佳条件。因素水平表见表1。 表1正交试验因素水平表 1.23原生质体形成率与再生率的计算f 01 2结果与分析 2.1 产酯酵母与耐高温酵母的生长曲线,见图1 0 2 4 6 8 l0 12 14 l6 l8 20 22 24 2 生长时间/ 图1 两株酵母菌的生长曲线 由图1可知,产酯酵母的生长特征是:前6h为延滞期 6~12h为对数生长,12h后菌体生长趋于稳定。而耐高温酵 的生长特征是:前4h为延滞期,4~lOh为对数生长,lOh后 体生长趋于稳定。为了使菌体细胞易于原生质化,一般选择jc 数生长期的菌体。这时的细胞正在生长,代谢旺盛,生长率高 群体细胞的化学组成、形态及生理特征比较一致。细胞壁对 解作用最为敏感。此时的原生质体形成率高,且再生率高…】 而且,利用对数生长期的单倍体酵母细胞来制备原生质体 行融合,能够有效地降低重组体(融合子)回复突变率旧。所E 本实验收集生长8h的产酯酵母和生长6h的耐高温酵母菌和 来进行原生质体形成与再生条件的研究。 2.2.2酵母菌原生质体形成与再生条件研究 2.2.2.1酵母菌原生质备 产酯酵母与耐高温酵母细胞酶解前与酶解后的对比显磺 照片,见图2(a、b、c、d)。 a产酯酵母酶解前细胞形态 b产酯酵母酶解后细胞形态 c耐高温酵母酶解前细胞形态d耐高温酵母酶解后细胞形态 图2产酯酵母与耐高温酵母细胞酶解前与酶解后的对比显微照片 1958年,Brenner等人提出了细菌原生质体的3条标准 濑 第二期 西良 酒 2011 没有细胞壁;失去细胞刚性,呈球形;对渗透压敏感。所以菌株 细胞壁溶解后,原生质体即以球状体的形态开始释放I 。由图 2(a、b、c、d)可知,酵母细胞酶解前的细胞形态大多数是椭圆, 也说明,菌株的原生质体形成与再生因不同菌株细胞生理和 结构的不同而存在差异。 3结论 而酶解后细胞都变成圆形,据此可以判断原生质体已经形成。 2.2.2.2酵母菌原生质体形成与再生正交试验结果 原生质体的形成与再生与很多因素有关,如菌龄、酶浓 度、酶解时间、预处理、原生质备时稳定剂的种类等都有 关联。原生质体再生与菌体本身特性有关外,还与制备的条件 产酯酵母原生质体形成与再生正交试验结果见表2,耐 高温酵母原生质体形成与再生正交试验结果见表3。 表2产酯酵母原生质体形成与再生正交试验结果 表3耐高温酵母原生质体形成与再生正交试验结果 当采用正交试验研究原生质体形成与再生条件时,一般 都以形成率与再生率乘积作为指标来衡量原生质体形成与再 生的最佳条件114-I ̄I。因此,由表2和表3可知,产酯酵母的原 生质体形成与再生的最优条件组合为A B。c 即预处理 20min、1%的蜗牛酶酶解30min。耐高温酵母的为A B2C:,即预 处理lOmin、1.5%的蜗牛酶酶解60min。在相同的形成与再生 条件下,产酯酵母的形成率与再生率都要高于耐高温酵母,这 和再生培养基等外在因素密切相关,尤其是原生质备时 的酶浓度和酶解时间对原生质体再生的影响较大 。因此,本 文选取预处理时间,酶浓度、酶解时间三个因素来研究产酯酵 母与耐高温酵母的原生质体形成与再生条件,得到两株酵母 菌原生质体形成与再生的最佳条件分别为:产酯酵母预处理 20min,1%的蜗牛酶酶解30min,原生质体形成率达89.7%,再 生率为19.3%;耐高温酵母预处理lOmin,1.5%的蜗牛酶酶解 60min,原生质体形成率达77.5%,再生率为7.7% 【参考文献l 【1】赵华,赵树欣,张维,等.耐温型产酯酵母的选育【J】.酿酒,1997,120 (3):17-19 【2】康明官.清香型白酒生产技术[MI.北京,化学工业出版社,2005.3 [3】蒋岳,路福平,王敏,等.原生质体电诱导融合构建高温酿酒酵母【J】. 微生物学杂志,2002,22(3):59—60,62. 『4】孙君社,李雪,李军席.原生质体融合构建耐耐高温酵母菌株叨.食品 与发酵工业,2001,28(5):1-5 【5】文铁桥,赵学慧.克鲁维酵母与酿酒酵母属间原生质体融合构建耐 耐高温酵母菌株lJ1.菌物系统,1999,18(1):89-93 【61I]叵巧琴,吴松刚.工业微生物育种fM】.北京:科学出版社,2005. 【7】刘志国.生物化学实验[M1.华中科技大学出版社,2007 【8】郭春叶,等.酵母菌生长曲线的测定及其转葡萄芪合酶基因重组茵 遗传稳定性的检测【J】.安徽农业科学,2007.35(7):1909-1910 [9】詹萍,苏龙,周乃东.红酵母原生质备和再生条件研究阴.安徽 农业科学2010,38(3):1154—1155,1172 [1O1李华,李娟.酿酒酵母单倍体1450原生质备的研究【J】_酿酒科 技,2009,179(5) [11]王康义,徐开成,夏培禹,等.产酯酵母诱变育种【J】.酿酒科技, 1999,93(3):26—27; [12]彭帮柱,岳田利,袁亚宏等.酵母菌原生质体融合技术[J】西北农业 学报,2004,13(1):101—103 [131王燕.利用双亲灭活原生质体融合技术进行米曲霉育种的研究 【14】魏明宝,张甲耀,王海,等.应用正交实验研究铜绿假单胞菌原生质 备与再生『J1.信阳师范学院学报,2005,18(2)169—171,175 [15】张华山,余响华,李亚芳.酿酒酵母与糖化酵母原生质体的形成与 再生【J】.武汉理工大学学报,2006,28(7):27—29 『16J-T_明兹,施巧琴,周晓兰,等.提高酵母菌原生质备与再生的方 法研究fJ】.微生物学杂志,2005,25(3):lo.13. 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