CTAB+试剂盒法
①CTAB
1) 将5ml提取液(CTAB)与β-巯基乙醇(5ml体系加150ul)加入离心管中,65℃水浴
10-20min。(因为β-巯基乙醇具有挥发性,加入样品前加入离心管中即可,不需太早加入)。
2) 研磨样品(加适量PVP),加入到上述离心管中,65℃水浴10-20min(在水浴过程中
需适时拿出摇晃,放气,使充分反应)。 3) 离心,12000rpm,4℃,10min,取上清。
4) 加入等体积氯仿/异戊醇(24:1)混匀,12000rpm,4℃,10min离心,取上清。(溶
液分三层,取最上层液体,中间为蛋白质层膜,取时应保持离心管坚直,用小头吸以防吸入下层和膜层物体)。 5) 重复步骤④。
6) 加入等体积异丙醇,冰箱冷冻30min,12000rpm,4℃离心10min,取沉淀(异丙醇事
先放至冰箱冷冻)。
②试剂盒
1) 粗提物400uL DEPC 水溶体,合并。
2) 加入500uL Buffer RL+10uL DTT solution (混匀,12000rpm,4℃,5min)。
3) 取上清液加入450ul无水乙醇,混匀,加入RNA分离柱,每次体积<600ul,12000rpm,
1min,弃滤液。
4) 加入500ul Buffer RWA到RNA 分离柱,12000rpm,30sec,弃滤液。
5) 加600ul Buffer RWB到RNA 分离柱,12000rpm,30sec,弃滤液。(沿管壁加入)。 6) 重复⑤。
7) 再次离心,12000rpm,2min。
8) RNA 分离柱安置新1.5ml吸集管,于柱膜加入50-200ul RNAse-Free 水,静置5min 9) 12000rpm,2min,洗脱。 10) 检验。
CTAB配方:500ml
用DEPC水配,需按顺序加
XYZ
1) CTAB: 10g
2) EDTA.Na2.H2O :0.7445g*5=3.7225g 3) Tris: 6.057g 4) PVP: 10g 5) NaCl: 40.95g
SSTE配方:500ml
1) NaCl: 29.22g 2) Feis-Hcl: 0.788g 3) SDS: 2.512—2.513g 4) EDTA: 0.146g
纯试剂盒法
1) 新鲜组织加液氮研磨,研磨成粉末状,样品(20-50mg)加入到含有450ul Buffer PE
的1.5ml灭菌管中,用移液反复1吹打直至崩裂,液中无明显沉淀 2) 12000rpm 4℃ 5min
3) 将上清液小心吸取到心得1.5ml灭菌管,加入上清液1/10 体积的Buffer NB(此时会
出现沉淀)振荡混匀 4) 12000rpm 4℃ 5min
5) 将上清液小心吸取到心得1.5ml灭菌管中,加入450Buffer RL(使用前确认已加入
50xDTT solution)加入9ul 50xDTT ,1ml Buffer RL 加20ul 50 xDTT ,用移液将溶液混合均匀。
6) 加入样品体积1/2的无水乙醇(此时方能出现沉淀)移液将溶液混匀
7) 立即将混合液(含沉淀)全部转移到RNA Spin Column 中(600ul 若>600ul 分批加
入)。
8) 12000rpm 1min 弃滤液
9) 加500ul Buffer RWA 12000rpm 30sec 弃滤液
10) 加600ul Buffer RWA 12000rpm 30sec 弃滤液(沿管壁加入)
XYZ
11) Dnase I 消化(可选择)
a. Dnase I 反应液配制
5ul 10x Dnase I Buffer+4ul Recombinant+Dnase I+41ul Rnase free d H20 到新1.5ml Rnase Free 管混合均匀。
b.向RNA Spin Column 膜加入50ul Dnase I 反应液,室温静置15min
C.向RNA Spin Column 膜加入350ul 的Buffer RWB,12000rpm,离心30sec,弃滤液 12) 加600ul Buffer RWB ,12000rpm,离心30sec,弃滤液
13) 将RNA Spin Column重新安置安置于2ml collection Tube 12000rpm 2min
14) 将RNA Spin Column安置于1.5ml 离心管(干净)在RNA Spin Column膜加入
50-200ul Rnase Free d H20 OR 0.1% DEPC 处理水,室温静置5min。 15) 12000rpm 2min
16) 若想提高RNA收量—膜加50-200ul Rnase Free d H20 OR 0.1 0.1% DEPC 水洗脱。
若想得到高浓度RNA-将洗脱液重新加回膜
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